LABORATORIO

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miércoles, 8 de junio de 2016

SESIÓN 8

COLIFORMES TOTALES POR FILTRACIÓN

1-OBJETIVO:



Contar las UFC/ml de coliformes totales en 100 ml de muestra, a través de filtración al vacío, en un medio ENDO.
Comprender y realizar adecuadamente la determinación de coliformes totales en un medio.

Interpretar los resultados obtenidos, de acuerdo con las normas aplicables.

2-FUNDAMENTO:


Son bacilos gramnegativos, aerobios y anaerobios facultativos, no esporulados. Del grupo <<coliforme>> forman parte varios géneros: Escherichia, Enterobacter,Klebsiella, Citrobacter, etc. Se encuentran en el intestino del hombre y de los animales, pero también en otros ambientes: agua, suelo, plantas, cáscara de huevo, etc.
La mayoría de los coliformes pueden encontrarse en la flora normal del tracto digestivo del hombre o animales, por lo cual son expulsados especialmente en las heces, por ejemplo Escherichia coli.
Por esta razón, su presencia constante en la materia fecal, los coliformes son el grupo más ampliamente utilizado en la microbiología de alimentos como indicador de prácticas higiénicas inadecuadas. Como los coliformes también pueden vivir en otros ambientes, se distingue entre coliformes totales y coliformes fecales. Esta práctica se refiere a coliformes totales.
El uso de los coliformes como indicador sanitario puede aplicarse para:
- La detección de prácticas sanitarias deficientes en el manejo y en la fabricación de los alimentos.
- La evaluación de la calidad microbiológica de un producto, aunque su presencia no necesariamente implica un riesgo sanitario, cuando los coliformes son de origen no-fecal.
- Evaluación de la eficiencia de prácticas sanitarias e higiénicas en el equipo.

- La calidad sanitaria del hielo y los distintos tipos de agua utilizados en las diferentes áreas del procesamiento de alimentos.

Los coliformes resisten la presencia de bilis en el medio de cultivo; cuando se desarrollan en ABRV, el ácido producido por la fermentación de la lactosa, ocasiona el vire del indicador rojo neutro y la precipitación de las sales biliares por lo que las colonias son color rojo oscuro y generalmente están rodeadas de un halo de sales biliares precipitadas, de color rojo claro o rosa. La posibilidad de contar las colonias se fundamenta en su dispersión y separación.
3-MATERIAL:


      Vaso de precipitado x2 (agua muestra, alcohol)
      Embudo
      Probeta 100 ml
      Pipeta Pasteur
      Matraz Kitasato
      Alcohol
      Placa Petri estéril
      Pinzas
      Mechero Bunsen
      Mechero

      Filtro reticulado

4-PROCEDIMIENTO:


Cogemos 100 ml de agua de muestra, vertimos y enrasamos en la probeta con la pipeta Pasteur.
Ahora filtramos al vacío el agua de muestra.
(Preparación para la filtración al vacío con el Kitasato): Preparamos la bomba de vacío, matraz Kitasato y mechero Bunsen (mismo procedimiento para las filtraciones). Echamos un poco de alcohol en un vaso de precipitado, agua destilada estéril en una placa Petri estéril y encendemos el mechero. Mojamos las pinzas en alcohol y flameamos rápidamente en el mechero Bunsen. Tomamos el filtro y lo metemos en agua destilada estéril, retirando el papel de filtro reticulado y colocándolo sobre el matraz. Flameamos las pinzas de nuevo y procedemos a verter la mezcla sobre el embudo del matraz y encendemos la bomba de vacío. Una vez filtrado, volvemos a flamear las pinzas y tomamos el filtro reticulado, colocándolo, con cuidado de no dejar burbujas, sobre el medio ENDO 
Ponemos fecha y nombre de práctica en la placa para identificarla, y metemos en el horno a 40ºC


5-RESULTADO:

En este caso hemos contado menos de 30UFC por lo que no sería un resultado representativo de la muestra.

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